賽默飛（Thermo Fisher Scientific）熒光定量PCR儀是一種廣泛應用于基因定量分析、基因表達研究、疾病檢測等領域的重要工具。其高精度的溫控系統(tǒng)、靈敏的熒光檢測技術，使得其成為現(xiàn)代生物學研究中的儀器之一。在使用熒光定量PCR儀時，操作規(guī)范、實驗條件的優(yōu)化以及數(shù)據(jù)分析都需要特別關注。本篇文章將詳細介紹賽默飛熒光定量PCR儀的使用方法，并提供一個完整的操作攻略，幫助實驗人員能夠高效、準確地完成熒光定量PCR實驗。

一、熒光定量PCR概述

熒光定量PCR（qPCR）是定量聚合酶鏈反應（PCR）的一種技術，利用熒光染料或熒光探針在PCR擴增過程中實時檢測DNA的數(shù)量變化，最終獲得模板DNA的相對或絕對定量。熒光定量PCR與傳統(tǒng)PCR的不同之處在于，它能夠實時監(jiān)測PCR擴增的過程，因此能提供更精確的定量數(shù)據(jù)。

賽默飛的熒光定量PCR儀采用了先進的熱循環(huán)和光學檢測系統(tǒng)，使得實驗者能夠通過實時熒光信號的變化來追蹤PCR反應的進程。

二、賽默飛熒光定量PCR儀的基本組成與工作原理

1. 基本組成

賽默飛熒光定量PCR儀通常由以下幾個核心部分組成：

• 熱循環(huán)模塊：用于加熱和冷卻樣本，完成PCR的擴增反應。它能夠在設定的溫度范圍內快速精確地加熱、冷卻反應體系。

• 光學檢測模塊：用于實時監(jiān)測PCR反應中的熒光信號。根據(jù)不同的熒光染料或探針，光學系統(tǒng)能夠分別檢測不同的熒光波長。

• 操作界面：通常為觸摸屏或計算機界面，用于設置實驗參數(shù)、控制實驗進程及進行數(shù)據(jù)分析。

• 溫控系統(tǒng)：提供高精度的溫度控制，確保PCR擴增過程中的各項反應步驟的穩(wěn)定性。

2. 工作原理

熒光定量PCR儀的工作原理是基于PCR擴增過程中，特定的熒光染料或探針與DNA模板的結合，在每個擴增周期結束時，儀器通過光學系統(tǒng)檢測到這些熒光信號的變化。通過記錄這些信號，儀器能夠提供每個循環(huán)中的熒光數(shù)據(jù)，從而實現(xiàn)對模板DNA濃度的定量分析。

三、賽默飛熒光定量PCR儀的使用步驟

使用賽默飛熒光定量PCR儀進行實驗時，首先需要對實驗的整體流程有清晰的了解。以下是完整的操作步驟，包括樣品準備、反應體系配制、儀器設置和數(shù)據(jù)分析等方面。

1. 樣品準備

• 提取核酸：在進行熒光定量PCR實驗之前，首先需要提取待檢測樣品中的DNA或RNA。核酸的質量和濃度將直接影響PCR實驗的結果，因此在樣品準備階段，保證核酸的純度和完整性是至關重要的。常用的核酸提取方法包括酚/氯仿法、柱式法等。

• RNA反轉錄：如果實驗的目標是定量mRNA，則需要進行反轉錄，將RNA轉化為cDNA。此步驟通常使用反轉錄酶（如MMLV或AMV）和隨機引物或oligo(dT)引物進行。

2. 反應體系配制

熒光定量PCR的反應體系通常包含以下組分：

• 模板DNA或cDNA：即待檢測的目標核酸。

• 引物：設計針對目標序列的特異性引物，確保只擴增目標DNA。

• 熒光染料或探針：用于實時監(jiān)測PCR反應過程中的熒光信號。常見的熒光染料包括SYBR Green，熒光探針則如TaqMan探針。

• PCR緩沖液：提供適合的pH和離子強度，以支持聚合酶的活動。

• dNTPs（脫氧核苷酸三磷酸）：提供擴增所需的核苷酸。

• 聚合酶：通常使用Taq DNA聚合酶或其改良型聚合酶（如Hot Start Taq），其耐高溫能力使其能夠在PCR反應中擴增目標DNA。

在配制反應體系時，需要確保所有的試劑和樣品均勻混合，并避免引物或探針的降解。

3. 熒光定量PCR儀器設置

• 開機預熱：在實驗開始之前，確保PCR儀器已經(jīng)開機，并完成溫控系統(tǒng)的預熱。

• 設置PCR程序：

• 初始變性：通常在95°C進行3-5分鐘，以確保DNA模板變性。

• 循環(huán)階段：包括變性（通常為95°C，30秒），退火（根據(jù)引物的Tm溫度設定，通常為55-65°C，30秒），延伸（通常為72°C，30秒至1分鐘）。

• 擴增階段的熒光檢測：每個循環(huán)結束時，在延伸步驟之后，熒光信號將被儀器檢測并記錄。

• 熒光染料或探針選擇：選擇適合的熒光染料或探針（如SYBR Green或TaqMan探針）。在儀器的設置中，您需要選擇合適的染料類型，并設定相應的波長。

• 數(shù)據(jù)采集設置：選擇熒光信號的采集方式，可以選擇每個循環(huán)結束時進行采集，也可以在特定周期時進行數(shù)據(jù)收集。

4. 開始實驗

在PCR程序設置完成之后，啟動實驗，儀器將自動執(zhí)行預設的步驟。此時，PCR反應體系會經(jīng)歷多個擴增周期，熒光信號會在每個周期后被記錄。通常實驗會在35-40個循環(huán)后結束，具體的循環(huán)次數(shù)取決于實驗的要求。

5. 數(shù)據(jù)分析

• 實時數(shù)據(jù)分析：賽默飛熒光定量PCR儀通常配有先進的軟件，能夠實時監(jiān)控PCR反應過程中的熒光信號變化。軟件可以生成熒光信號與循環(huán)數(shù)的關系圖（即熒光曲線），從中可以獲取PCR反應的閾值循環(huán)數(shù)（Ct值）。

• Ct值計算：Ct值（閾值循環(huán)數(shù)）是指熒光信號達到設定閾值時對應的PCR擴增周期數(shù)。Ct值與初始模板量成反比，Ct值越小，模板量越多。

• 定量分析：根據(jù)Ct值，可以使用標準曲線法或相對定量法進行分析。標準曲線法需要通過已知濃度的標準品制作標準曲線，而相對定量法則通常采用對照基因進行歸一化處理，比較實驗組和對照組之間的表達差異。

四、常見問題與解決方案

1. 熒光信號弱或無信號

• 問題分析：可能是由于模板濃度過低，PCR反應體系不適，或者熒光染料的選擇不當。

• 解決方案：檢查模板的質量和濃度，重新優(yōu)化PCR反應體系，確保反應條件合適。

2. 非特異性擴增

• 問題分析：可能是由于引物設計不良、退火溫度過低、PCR循環(huán)條件不合適等原因。

• 解決方案：優(yōu)化引物設計，提高退火溫度，減少非特異性擴增。

3. Ct值不穩(wěn)定

• 問題分析：可能是由于實驗條件波動，PCR儀器校準不準確。

• 解決方案：確保實驗條件穩(wěn)定，并定期校準PCR儀器。

五、總結

賽默飛熒光定量PCR儀的使用方法包括從樣品準備、反應體系配制到儀器設置和數(shù)據(jù)分析的全過程。掌握這些基本操作步驟，并結合優(yōu)化實驗條件，能夠確保熒光定量PCR實驗的準確性和高效性。在實際應用中，根據(jù)實驗目標和需求選擇合適的PCR條件和數(shù)據(jù)分析方法，將大大提高實驗結果的可靠性和重復性。